荧光标记细胞流程

1. 培养细胞，分别取1、3、7天样品（看实际情况需要）
2. 样品用PBS清洗2次
3. 取样品置于戊二醛中固定（至少1小时以上），一般可以取完7天的样再一起做荧光标记
4. 吸走戊二醛，加入PBS清洗3次，每次5 min
5. 用PBS配10 mg/ml的BSA溶液，每个样品加1ml，于37℃下孵育30min以上
6. 吸走BSA溶液，加入PBS清洗3次，每次5 min
7. 用PBS配一抗溶液（actin），按体积比actin：PBS=1：50稀释，每个样品加50l，仅滴于样品表面（具体用量可以自行选择），于37℃下孵育30min以上
8. 吸走actin，加入PBS清洗3次，每次5 min
9. 用PBS配生物素标记的二抗溶液（IgG），按体积比IgG：PBS=1：100稀释，每个样品加50l，仅滴于样品表面（具体用量可以自行选择），于37℃下孵育30min以上
10. 吸走IgG，加入PBS清洗3次，每次5 min
11. 用PBS配荧光素（FITC-IgG），按体积比FITC-IgG：PBS=1：100稀释，每个样品加50l，仅滴于样品表面（具体用量可以自行选择），于37℃下孵育30min以上
12. 吸走FITC-IgG，加入PBS清洗3次，每次5 min
13. 用荧光显微镜拍照

注：1、若在细胞培养箱中于37℃下孵育，则上述操作步骤都应在超净台上进行，且要换用新的24孔板来装样品，PBS配的BSA溶液应通过滤膜过滤灭菌。若在一般实验台上操作，则需要在室温下孵育2小时以上。
2、PBS配方和细胞培养中所用的PBS配方一致。